膜蛋白因其高度疏水性、低溶解度以及易聚集的特性,一直被视为蛋白质组学研究中的技术难题。为了实现对膜蛋白的高效提取、消化与质谱分析,样本前处理策略的选择尤为关键。其中,FASP(Filter-Aided Sample Preparation) 和 in-gel digestion(凝胶内消化) 是两种常用的蛋白质酶解方法,也可用于膜蛋白的处理,但需进行优化。
一、膜蛋白的挑战:为何难“消化”?
膜蛋白通常嵌入于细胞膜内,含有多个跨膜结构域,具有以下特点:
高疏水性:不易溶于水性缓冲液中,容易形成聚集体;
低丰度:在整体蛋白质中占比小,尤其是多跨膜蛋白;
易丢失或变性:在蛋白提取和酶解过程中容易降解或沉淀;
富含脂质污染:影响下游的酶解效率和质谱分析。
膜蛋白的样本前处理方法必须既能去除干扰物(如去污剂、脂质),又能提高蛋白质的溶解性和酶解效率,兼容后续质谱分析。
二、FASP(Filter-Aided Sample Preparation):膜蛋白处理的高效方案
1、原理简介
FASP方法由Wisniewski等人于2009年提出,基于超滤离心柱(通常为10或30 kDa cut-off),利用变性剂使蛋白质变性并保留于滤膜上,在滤膜上完成洗脱、还原、烷基化和酶解全过程。
2、应用于膜蛋白的优势
有效去除干扰物:通过滤膜多次洗涤,有效去除SDS、尿素等变性剂,避免干扰质谱;
避免蛋白沉淀:膜蛋白被“捕获”在滤膜上,避免在酶解过程中因疏水性而沉淀;
可高效处理低丰度样本:适用于微量膜蛋白样本,常用于组织或细胞膜分离物。
3、优化建议
| 步骤 | 建议 |
|---|---|
| 蛋白变性 | 使用8M尿素+0.1% SDS或CHAPS帮助溶解膜蛋白 |
| 酶解策略 | 先用Lys-C预消化,再接Trypsin,增强跨膜肽段切割效率 |
| 洗涤步骤 | 反复用50 mM NH₄HCO₃或0.5 M TEAB清洗,完全去除尿素 |
| 酶解时间 | 延长至16–18小时,提升难切位点的酶解率 |
4、适用情境
富含SDS等强变性剂的样本(如膜蛋白提取液);
低丰度或难溶解的膜蛋白混合物;
需避免凝胶染色干扰的蛋白组学项目。
三、in-gel digestion:兼顾富集与分辨率的经典策略
1、原理简介
in-gel digestion是将膜蛋白通过SDS-PAGE分离后,切下对应条带或区域,在凝胶块中完成脱色、还原、烷基化及酶解。肽段随后经脱胶、浓缩,进入质谱分析。
2、优势与局限
| 优势 | 局限 |
|---|---|
| 可富集目标膜蛋白 | SDS-PAGE易导致疏水膜蛋白迁移异常或丢失 |
| 背景低,污染少 | 脱胶和洗涤步骤繁琐,可能丢失肽段 |
| 可直观筛选目标蛋白 | 样本量利用率低,整体回收率有限 |
3、针对膜蛋白的优化建议
上样前溶解:使用Laemmli buffer或含1% SDS的裂解液提高膜蛋白上样效率;
选用染料:使用MS兼容性较好的染料(如Coomassie G-250);
脱胶步骤:尽量避免使用高浓度乙腈,减少肽段流失;
双酶策略:Lys-C + Trypsin组合酶解,可提高跨膜区域消化效率;
处理时间:适当延长酶解时间,提升疏水肽段释放率。
4、适用情境
对特定膜蛋白(如通道蛋白、受体)进行富集分析;
需区分不同翻译后修饰状态的蛋白亚型;
适用于膜蛋白表达载体或纯化样本。
四、膜蛋白样本处理方法的对比
| 项目 | FASP | in-gel digestion |
|---|---|---|
| 样本要求 | 可处理SDS裂解样本 | 需进行PAGE分离 |
| 操作流程 | 一管内完成,流程整合 | 多步骤、操作耗时 |
| 适配度 | 适用于复杂混合物 | 适用于富集目标蛋白 |
| 成本 | 中等,需超滤柱 | 较低 |
| 质谱兼容性 | 高,几乎无污染 | 高,但肽段回收率低 |
五、百泰派克生物科技的膜蛋白组学解决方案
在膜蛋白研究领域,标准化的样本处理流程与高灵敏质谱平台的整合是获得可靠数据的关键。百泰派克生物科技依托先进的Orbitrap Exploris 480与高覆盖率的酶解体系,已构建了一套针对膜蛋白的专属分析流程,包括:
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支持定量蛋白组、多维修饰组(如磷酸化、糖基化)联用分析。
我们在GPCR、转运蛋白、膜受体等研究领域积累了丰富经验,为膜蛋白的功能解析与药靶发现提供坚实的数据支撑。
膜蛋白的“难消化”不应成为蛋白组学研究的瓶颈。通过科学选择如FASP或in-gel digestion等样本处理策略,并结合优化的酶解条件和高分辨质谱平台,科研人员完全可以实现对膜蛋白的高覆盖、高灵敏度检测。如您在膜蛋白研究中遇到挑战,欢迎联系百泰派克生物科技,我们将为您量身定制zhuānyè的膜蛋白组学解决方案,加速您的科研发现!
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